Die Präanalytik spielt eine entscheidende Rolle für die Aussagekraft mikrobiologischer Untersuchungen. Sorgfältige Probenentnahme, Lagerung und der Transport sind essenziell, um verlässliche Ergebnisse zu gewährleisten und Verfälschungen durch Kontamination oder unsachgemäße Handhabung zu vermeiden. Bitte beachten Sie folgende allgemeine Hinweise:

1.    Probenentnahme

• Entnehmen Sie das Material immer direkt vom Infektionsort, ohne eine Kontamination durch umliegendes Gewebe oder andere Quellen.
• Wenn möglich, sollte die Probenentnahme vor Beginn einer Antibiose oder während einer gezielten Antibiotika-Pause erfolgen, um die Nachweisrate empfindlicher Erreger nicht zu beeinträchtigen.
• Achten Sie darauf, ausreichend Material zu entnehmen, um eine vollständige Diagnostik zu ermöglichen.

2.    Probenbeschriftung

• Beschriften Sie alle Röhrchen eindeutig mit dem Patientennamen, Entnahmeort und der genauen Uhrzeit der Probenentnahme.
• Bei mehreren Proben aus unterschiedlichen Entnahmeorten ist eine klare Kennzeichnung besonders wichtig.

3.    Lagerung und Transport

• Empfindliche Erreger: Manche Erreger, wie etwa bei Verdacht auf Lambliasis, Shigellose oder Meningokokken-Meningitis, sind außerhalb des Körpers extrem empfindlich. Solche Proben sollten schnellstmöglich ins Labor transportiert werden.
• Nicht steriles Material: Proben aus nicht sterilen Körperregionen, wie Urin oder respiratorisches Sekret, sollten bis zur Abholung bei 4 °C gelagert werden. Dies verhindert eine Überwucherung durch unbeteiligte Keime und sichert die klinische Aussagekraft. Dies ist insbesondere bei der Diagnostik von Harnwegsinfekten entscheidend, da die Bakterienmenge eine zentrale Rolle für die Interpretation der Ergebnisse spielt.
• Probenmaterial sollte stets in gut verschlossenen Behältern aufbewahrt werden, um ein Auslaufen und die Kontamination von Transportbehältern oder anderen Proben zu vermeiden.

4.    Vermeidung von Verfälschungen

• Verwenden Sie für sterile Materialien wie Blutkulturen oder Liquor stets steriles Zubehör und vermeiden Sie jeden Kontakt mit der Umgebung.
• Für Urin- oder respiratorisches Sekret ist eine saubere Entnahme entscheidend, um die Qualität der Diagnostik zu sichern.

5.    Besonderheiten bei spezifischen Fragestellungen

• Bei bestimmten Fragestellungen können zusätzliche Anforderungen gelten, z. B. bei der Diagnostik von anaeroben Erregern oder Pilzen. Bitte beachten Sie in diesen Fällen unsere spezifischen Hinweise für das jeweilige Material.

Wir bitten alle Einsender, diese allgemeinen Hinweise zu beachten und ergänzend die spezifischen Präanalytik-Anleitungen für Blutkulturen, Urin, respiratorisches Sekret und andere Materialien zu berücksichtigen. Sollten Sie Fragen zur korrekten Probenentnahme oder Lagerung haben, steht Ihnen unser mikrobiologisches Team jederzeit gerne zur Verfügung.

siehe Rachen-, Ohren-, Nasen-, Augenabstrich

siehe Genitalabstrich

siehe Wundabstrich

Grundsätzlich empfehlen wir für Abstrichuntersuchungen die Verwendung von eSwab® Abstrichröhrchen.
Siehe hierzu bitte auch Untersuchungsmaterialien A-Z/ Abstriche

      Becton-Dickinson (BD) Bactec-Blutkultur­flaschen

Lagerung und Transport

Unverzüglicher Transport in das Labor (innerhalb 4h)

Beimpfte Blutkulturen vor dem Transport bei Raumtemperatur lagern, nicht im Kühlschrank!!!

Probennahme

• Die Entnahme von Blutkulturen sollte vor der ersten Antibiotikagabe bzw. vor Umstellung einer antibiotischen Therapie erfolgen. Wurde bereits eine systemische Antibiotikatherapie begonnen, sinkt die Wahrscheinlichkeit für eine erfolgreiche Erregeranzucht um bis zu 50%!
• Die Blutentnahme erfolgt unabhängig von der Körpertemperatur des Patienten. Eine Bakteriämie tritt unabhängig von Fieberspitzen oder Schüttelfrost auf. Blutkulturen sollten immer unverzüglich ohne Verzögerung abgenommen werden!
• Auf sterile Vorgehensweise bei der Blutentnahme achten um Kontaminationen durch Hautflora zu vermeiden.
• Keine Blutentnahme aus peripher-venösen Zugängen oder ZVK, da es hier gehäuft zu Kontaminationen mit Hautkeimen kommt. Eine Ausnahme besteht bei Verdacht auf Gefäßkatheter-assoziierte Infektionen: Hier sollten 2x2 Flaschen (aerob/anaerob) aus dem betroffenen Gefäßzugang sowie parallel dazu 2x2 Flaschen (aerob/anaerob) aus einer peripheren Venenpunktion beimpft werden.
• Es sollten insgesamt mindestens 2x2 Flaschen (aerob/anaerob), besser 3x2 BD-Bactec Blutkulturflaschen mit je 8-10 ml Blut beimpft werden. Idealerweise werden dabei separate Venenpunktionen durchgeführt um evtl. auftretende Kontaminationen durch Hautflora sicher einordnen zu können. Bei Kindern: PEDS-Flasche (für ca. 3 ml Blut) verwenden.
• Vor dem Beimpfen der Blutkulturen muss die Kunststoffmembran der Flasche desinfiziert werden. Die Membran ist nicht steril und kann Quelle für Kontaminationen sein.
• Mykobakterien können nicht in konventionellen Blutkulturen nachgewiesen werden. Bei Verdacht auf Landouzy-Sepsis bitte vorherige Rücksprache ärztlicherseits mit diensthabendem Laborarzt. Wir benötigen 20 mL Citratblut für die kulturelle Anzucht (Versanduntersuchung).

Aus der Praxis: Die Verwendung von Becton Dickinson (BD) Blutkulturflaschen ermöglicht in Verbindung mit dem neuartigen MALDI-TOF System für die schnelle Erregeridentifizierung einen Direktnachweis von Erregern aus der positiv gemeldeten Blutkultur. Damit liegen relevante Befunde häufig einen Tag schneller vor als mit der traditionellen Mikrobiologie!

    Copan eSwab®
Standardabstrichtupfer für Vaginalabstriche

    Copan eSwab® Urethra
Für Urethralabstriche

Lagerung und Transport:
Möglichst unverzüglicher Transport in das Labor.
Proben sind möglichst gekühlt bei 4-8°C aufzubewahren.

Bemerkungen:
Die Untersuchung auf Mykoplasmen und Ureaplasmen erfolgt bei Vaginal- und Urethralabstrichen automatisch.
Chlamydia trachomatis-PCR und/oder Neisseria gonorrhoeae PCR-Untersuchungen müssen gesondert angefordert werden. Bitte auf Anforderungsschein entsprechend vermerken.
Als Untersuchungsmaterial werden für den kulturellen Erregernachweis und molekularbiologische Untersuchungen beflockte eSwab® Abstrichtupfer mit Transportmedium empfohlen.

Lagerung und Transport
Für die kulturelle Diagnostik ist ein unverzüglicher Transport in das Labor notwendig, in Notfällen, außerhalb der regulären Transport- und Laborarbeitszeiten, bitte telefonische Meldung an diensthabenden Laborarzt. und ggf. gesonderten Probentransport organisieren

Für PCR und serologische Untersuchungen können die Proben gekühlt bei 4-8°C vorübergehend aufbewahrt werden

Mindestmenge
Konventionelle bakterielle Kultur:  mindestens 1 ml.

Allgemeine Bemerkungen

• Achtung: Die Anforderung „Erreger und Resistenz“ oder „pathogene Erreger“ umfasst nur den kulturellen Nachweis bakterieller Erreger!
• PCR-Untersuchungen zum Nachweis viraler oder bakterieller Erreger müssen separat angefordert werden, ggf. größeres Probenvolumen notwendig.
• Zur Bestimmung erregerspezifischer Antikörper-Indices (Serologische Diagnostik) muss ein Liquor/Serum-Paar zeitgleich gewonnen werden.

Lagerung und Transport

Möglichst unverzüglicher Transport in das Labor (nicht länger als 24h).
Proben sind möglichst gekühlt bei 4-8°C aufzubewahren.
 

Sputum

Mindestmenge: 2-5ml.

Bei noch nicht gesicherter Diagnose sollten mindestens 3 Proben an drei verschiedenen Tagen gewonnen werden.
Gewinnung durch Abhusten aus tiefen Atemwegen. Morgensputum besonders geeignet. Kein Sammelsputum.

Wenn kein Sputum gewonnen werden kann, sind folgenden Alternativen möglich:

• Sputuminduktion durch Inhalation von 5-10%iger Kochsalzlösung
• Bronchoskopie (bei Erwachsen vorzuziehen)
• Gewinnung von Magensaft oder Magenspülwasser (bei Kindern vorzuziehen)

Bronchialsekret

Mindestmenge: 2-5ml

Bronchoskopische Gewinnung! Trachealsekret von intubierten Patienten ist wegen der potentiellen Kontamination durch Begleitkeime nicht empfohlen.

Die Anwendung von Lokalanästhetika kann das Untersuchungsergebnis verfälschen.

Bronchoalveolare Lavage

Mindestmenge: 20-30ml

Möglichst gezielt das betroffene Segment lavagieren

Die Anwendung von Lokalanästhetika kann das Untersuchungsergebnis verfälschen

Magensaft/-spülwasser

Bei Verdacht auf eine offene pulmonale Tuberkulose kann bei Kindern < 6. Lebensjahr die Untersuchung von Magensaft eine sinnvolle Alternative zur Untersuchung von Sputa darstellen.

Für Tuberkulose-Kulturen aus Magennüchternsekret  2-5 ml, aus Magenspülwasser 20-30 ml einsenden.

Für die Untersuchung von Magensaft werden Spezialröhrchen mit Trinatriumphosphatpuffer benötigt. Bei Bedarf bitte anfordern!

Gewebeproben

Mindestmenge: So viel Untersuchungsgut wie möglich.

Steriler Probenbehälter ohne Zusätze (kein Formalin!), evtl. durch Zugabe steriler Kochsalzlösung vor Austrocknung schützen.

Abstriche

Abstriche sind für die Tuberkulose/Mykobakteriendiagnostik in der Regel nicht geeignet. Kulturelle Diagnostik nur aus Primärmaterial sinnvoll (Biopsien, Punktate, Geschabsel).

Pleura- und Aszitespunktate, Aspirate, Exsudate

Mindestmenge: 30 - 50ml

Möglichst große Probenmengen in sterilem Probenbehälter einsenden. Die zu erwartenden Erregerkonzentration fällt in der Regel gering aus.

Urin

Mindestmenge: 30 ml,

Vorzugsweise Morgenurin, kein Sammelurin, kein Mittelstrahlurin

Liquor

Mindestmenge : 3-5 ml,
wenn zusätzlich zur Kultur eine TBC-PCR angefordert wird, wird insgesamt ca. 8-10ml Liquor benötigt.

Lagerung und Transport

Möglichst unverzüglicher Transport in das Labor.
Proben sind möglichst gekühlt bei 4-8°C aufzubewahren.

Gewebeproben

Mindestmenge: So viel Untersuchungsgut wie möglich.

Steriler Probenbehälter ohne Zusätze (kein Formalin!), evtl. durch Zugabe steriler Kochsalzlösung vor Austrocknung schützen.
 

Punktate

Möglichst große Probenvolumina einsenden.

Punktat/Aspirat in steriler Spritze aufnehmen und mit sterilem Verschluss versehen.

Bei zu erwartenden längeren Transportzeiten kann zusätzlich zu Nativmaterial in Spritzen auch Probenmaterial in Blutkulturflaschen überführt und eingesandt werden. Mindestfüllmenge bei pädiatrischen Blutkulturen 1-3ml, bei „normalen“ Blutkulturen 8-10ml.

Copan eSwab®
Standardabstrichtupfer für mikrobiologische Untersuchungen

Lagerung und Transport
Möglichst unverzüglicher Transport in das Labor.
Proben sind möglichst gekühlt bei 4-8°C aufzubewahren.

Bemerkungen
Für Abstrichuntersuchungen sollten ausschließlich die beflockten eSwab® Abstrichröhrchen mit Transportmedium verwendet werden!

Lagerung und Transport

Möglichst unverzüglicher Transport in das Labor.
Proben sind möglichst gekühlt bei 4-8°C aufzubewahren.
 

Allgemeine Hinweise

• Bitte respiratorisches Material nativ in sterilen Containern einsenden! In der Regel sind Tracheal-/ Bronchialsekrete oder bronchio-alveoläre Spülflüssigkeiten aussagekräftiger als Sputum.
• Rachenabstriche sind nur bei Infektionen der oberen Atemwege zum kultur-basierten, Nachweis bakterieller Erreger geeignet. Bei  tiefen Atemwegsinfektionen (Pneumonie) sollte Sputum, Tracheal-bzw. Bronchialsekret oder BAL-Flüssigkeit eingeschickt werden.
• Möglichst Probennahme vor Antibiotikatherapie.
• Atypische Erreger müssen explizit angefordert werden. Siehe hierzu bitte auch „Besondere Untersuchungsaufträge“ bzw. Laborbereich „Molekularbiologie“.
• Für Legionellen und Tbc die Ausnahmeziffer 32006 angeben!
   

Sputum

• Mindestmenge: 2-5ml.
• Bei Verdacht auf Tuberkulose: doppelte Menge oder zusätzliche separate Probe.
• Gewinnung durch Abhusten aus tiefen Atemwegen. Morgensputum besonders geeignet. Kein Sammelsputum.
• Ggf. Sputuminduktion mittels Inhalation steriler Kochsalzlösung (5-10%).
• Es sollte nur makroskopisch eitriges Sputum eingesandt werden.

Bronchoalveolare Lavage

• Mindestmenge : 20-30ml
• Bei Verdacht auf Tuberkulose: doppelte Menge oder zusätzliche separate Probe.
• Möglichst gezielt das betroffene Segment lavagieren.
• Die Anwendung von Lokalanästhetika kann das Untersuchungsergebnis verfälschen.

Lagerung und Transport

Möglichst unverzüglicher Transport in das Labor.
Proben sind möglichst gekühlt bei 4-8°C aufzubewahren.
 

.Allgemeine Hinweise

Cave: „E+R“ umfasst nur die kulturvierbaren bakteriellen Infektionserreger Salmonella, Shigella, Yersinia und Campylobacter!

Die Diagnostik von gastrointestinalen Viren (Rota-, Adeno, Astro- sowie Norovirus)  sowie Clostridioides difficile muss separat angefordert werden.

Untersuchungen auf Lamblien, Amöben, Würmer und Wurmeier müssen ebenfalls separat angefordert werden.  Für die mikroskopische Diagnostik benötigen wir frischen (lauwarmen) Stuhl.

Zur Erhöhung der Sensitivität sollten 3 Stuhlproben eingesandt werden. Diese sollten aus 3 unterschiedlichen Stuhlgängen, optimaler Weise von drei aufeinander folgenden Tagen, stammen.

Bitte bei Kassenpatienten die EBM-Ausnahmekennziffer „32006” nicht vergessen, um das Budget nicht zu belasten.

   Urinröhrchen ohne Stabilisator

   Borat-haltiges Stabilisatorröhrchen

Lagerung und Transport
Urinproben ohne Stabilisator (gelber Schraubverschluss) sollten gekühlt gelagert (4-8 °C) und möglichst rasch in das Labor transportiert werden.
Urin in Borat-haltigen Stabilisatorröhrchen (grüner Schraubverschluss) kann bis zu 24h bei Raumtemperatur gelagert bzw. transportiert werden.

Bemerkungen
Vor Abgabe der Urinprobe sollte eine adäquate Reinigung der äußeren Genitalien mit Wasser und Seife durchgeführt werden, ggf. Patienten bei Reinigung und Probennahme unterstützen.

Einsatz von Stabilisatorröhrchen vs Eintauchnährböden
Generell gilt: Urindiagnostik aus Borat-haltigen Stabilisatorröhrchen (grüner Schraubverschluss) liefert die besseren bakteriologischen Resultate in kürzerer Zeit! Das Borat-haltige Transportmedium verhindert die Vermehrung der Bakterien, töten sie aber keineswegs ab, so bleibt die Keimzahl auch bei Raumtemperatur stabil.
Wir raten vom Einsatz von Eintauchnährboden („Uricult“) ab.  Die Ermittlung der Keimkonzentration ist bei der Verwendung von Eintauchnährböden nicht möglich. Außerdem können beim Einsatz von Eintauchnährböden zusätzliche Arbeitsschritte für die Gewinnung von Reinkulturen notwendig sein, wodurch sich Verzögerungen in der Befundung ergeben können. Ein erstes Resultat inkl. Erregeridentifizierung und Angaben zur Keimzahl pro ml erhalten Sie bei der Untersuchung von Urinproben in Stabilisatorröhrchen in der Regel innerhalb von 24 Stunden.

Cave: Urin aus Borat-haltigen Stabilisatorröhrchen ist nicht für molekularbiologische Untersuchungen, z.B.  Chlamydia trachomatis bzw. Gonokokken-PCR geeignet! Bitte hierzu Nativurin einsenden.

Copan eSwab®
Standardabstrich für mikrobiologische Un­tersuchungen

Lagerung und Transport

nach Probennahme: gekühlt (4-8 °C), Transport ins Labor möglichst innerhalb 8 Stunden.

Bemerkungen

Für Abstrichuntersuchung von Wunden sollten ausschließlich die beflockten eSwab® Abstrichröhrchen mit Transportmedium verwendet werden!

Grundsätzlich ist die Aussagekraft von Wundabstrichen im Vergleich Nativmaterial aus Wunden eingeschränkt. Nach Möglichkeiten sollten stets Gewebeproben oder Punktate/Aspirate (z.B. von Empyemen oder Abszessen) eingeschickt werden.

Vor dem Abstreichen einer Wundfläche sollte diese, insbesondere bei chronischen Wunden, gereinigt werden und Fibrin, Detritus und Eiterbeläge entfernt werden. Der Wundabstrich erfolgt anschließend von gesäuberten Wundgrund

Abstriche von kutanen Fisteln oder von noch geschlossenen, kutanen Abszessen werden nicht empfohlen, da hier lediglich der Nachweis von Standortflora der Haut zu erwarten ist.  Das Material sollte aus der Tiefe des Infektionsprozesses z.B. im Rahmen der Abszessspaltung oder des chirurgischen Debridements gewonnen werden.